Corante de Shorr

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A solução corante de Shorr é uma solução para coloração em microscopia para corpos inclusos.[1]

Também trata-se a coloração de Shorr do protocolo (método) de coloração que utiliza esta solução corante.[2]

Aplica-se em tecidos fixados em fixador a base de formol e montados em parafina em seções cortadas de 6 mícrons.

Formulação da solução corante[editar | editar código-fonte]

Soluções estoque[editar | editar código-fonte]

Solução A[editar | editar código-fonte]

  1. Escarlate de Biebrich a 10% em água destilada (15 gr em 150 ml).
  2. Ácido fosfomolíbdico a 10% em água destilada (15 gr em 150 ml).
  3. Ácido fosfotúngstico a 10% em água destilada (15 gr em 150 ml).

Misturar estas três soluções primárias, numa solução homogênea.

Solução B[editar | editar código-fonte]

Verde luz amarelado 10% em água destilada (1,25 gr em 12,50 ml). Nesta solução, é conveniente acrescentar-se 1% (neste caso, para este volume, aproximadamente 0,15 ml, 3 gotas, de glutaraldeído em solução 25% para conservação).

Solução C[editar | editar código-fonte]

Orange G 10% em água destilada (1,25 gr em 12,50 ml).

Observação[editar | editar código-fonte]

Quantidades maiores e proporcionais destas soluções parciais podem ser preparadas previamente.

Preparação final[editar | editar código-fonte]

Vinte quatro horas antes do uso, estas quantidades de soluções prévias produzidas devem ser acrescentadas a 10 ml de ácido acético glacial em 500 ml de álcool etílico 75% aquoso, homogeniza-se e completa-se o volume total a 1 litro com mais álcool etílico a 75%.

Método[2][editar | editar código-fonte]

  1. Remover a parafina do tecido montado em xilol. Lavar em álcool absoluto, álcool 95% e água destilada.
  2. Hematoxilina de Harris, 3 a 5 minutos. Lavar em água.
  3. Diferenciar em álcool,ácido a 1% até não haver mais hematoxilina no citoplasma das células, (usa-se aqui microscópio).
  4. Lavar em água, lavar em amônia (solução) até a cor azulada, lavar em água corrente.
  5. Colocar as lâminas no corante de Shorr por 1 minuto.
  6. Lavar com álcool a 95%. Verificar usando microscópio. Tecido conjuntivo irá adquirir uma cor verde clara quando a diferenciação estiver completa
  7. Enxague algumas vezes em álcool absoluto. Algumas vezes em xilol. Montar a amostra para observação posterior e arquivamento.

Resultados[editar | editar código-fonte]

Corpos inclusos: vermelho; tecido conjuntivo: verde claro; tecido elástico: vermelho púrpura; músculos: vermelho; queratina: laranja; eritrócitos: laranja avermelhado; núcleo celular: azul.

Referências

  1. Shorr E. A NEW TECHNIC FOR STAINING VAGINAL SMEARS: III, A SINGLE DIFFERENTIAL STAIN. Science. 1941, Dec 5; 94 (2449):545-6. Abstract - www.sciencemag.org
  2. a b Levinson, Samuel A.; MacFate, Robert P. - Clinical Laboratory Diagnosis. 7th edition, Philadelphia, Lea & Febiger, 1969, 1323 pp

Ligações externas[editar | editar código-fonte]

Citações de aplicações do corante e sua metodologia:

Ver também[editar | editar código-fonte]