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Lentinus brumalis

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Como ler uma infocaixa de taxonomiaLentinus brumalis

Classificação científica
Domínio: Eukaryota
Reino: Fungi
Filo: Basidiomycota
Classe: Agaricomycetes
Ordem: Polyporales
Família: Polyporaceae
Género: Lentinus
Espécie: L. brumalis
Nome binomial
Lentinus brumalis
(Pers.) Zmitr. 2010
Sinónimos
  • Boletus brumalis Pers. 1794
  • Polyporus brumalis (Pers.) Fr. 1818
  • Polyporus fuscidulus (Schrad. ex J.F. Gmel.) Fr. 1838
  • Polyporus trachypus Rostk. 1848
  • Leucoporus brumalis (Pers.) Speg. 1926
Lentinus brumalis
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Características micológicas
Himênio poroso
Píleo é excêntrico
Estipe é nua
A cor do esporo é branco
A relação ecológica é saprófita
Comestibilidade: não comestível

A Lentinus brumalis é uma espécie de fungo não comestível da família Polyporaceae. O epíteto específico brumalis significa "ocorre no inverno", descrevendo como essa espécie tende a frutificar durante o inverno.[1][2] Ela causa podridão branca em madeira de lei morta[3] e é distribuída por todo o Hemisfério Norte em zonas temperadas e boreais.[4]

Taxonomia

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A Lentinus brumalis foi descrita pela primeira vez como Boletus brumalis em 1794 por Christiaan Hendrik Persoon em seu trabalho Neuer Versuch einer systematischen Eintheilung der Schwämme (Nova tentativa de classificação sistemática de fungos).[5] Foi transferida para o gênero atual, Lentinus, em 2010 por Ivan V. Zmitrovich.[6]

Descrição

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O píleo é redondo, amplamente convexo, com um diâmetro de 1,5 a 10 cm e 0,5 cm de espessura; ele é deprimido no meio e um pouco zonado. A superfície do píleo é seca, embora raramente seja peluda. Sua cor varia de marrom-amarelado a marrom-escuro. A margem do píleo é frequentemente enrolada, especialmente em espécimes jovens.[7][8]

Há poros de 3 mm de profundidade na parte inferior do píleo de cor branca a creme. Eles são espaçados de 2 a 4 poros por mm².[9] Os poros são moderadamente largos, (0,5-)1-1,5 mm de largura e arredondados até quase em forma de diamante, que descem um pouco pelo estipe (decorrentes) e, portanto, são ligeiramente alongados.[10] Eles mudam de aparência de opacos para lustrosos quando a orientação para a luz é alterada.[9]

O estipe tem de 2,5 a 4 cm de comprimento e de 2 a 5 mm de espessura.[7] É cinza a marrom, ocasionalmente com tons vermelhos e geralmente mais claro do que o píleo.[9] Sua superfície seca é lisa ou finamente feltrada a levemente escamosa.[11] A carne é branca e sua consistência é macia a elástica; ela não tem sabor ou odor específicos.[10]

Características microscópicas

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A esporada é branca.[9] Os esporos são elípticos a cilíndricos e medem de 5 a 7 por 1,5 a 2,5 μm. Eles são lisos e não amiloides, não mudando de cor quando montados com iodo.[7] Os basídios, estruturas que carregam os esporos, possuem forma de taco, têm 4 esporos cada e medem 16-22 por 5-6,5 μm. Os cistídios estão ausentes.[9]

As fíbulas são encontradas em todo o tecido. O sistema hifal é dimítico, composto por dois tipos de hifas. As hifas geradoras da carne têm de 4 a 10 μm de largura, são incolores, de paredes finas e, ocasionalmente, ramificadas. A hifa de ligação da carne tem cor e largura semelhantes, embora as vezes possa aumentar até 13 μm de largura. Ela tem paredes espessas e não é septada. É frequentemente ramificada e os ramos se estreitam até 1 a 2 μm de largura.[9]

O hidróxido de potássio (KOH) não afeta a cor de nenhuma parte desse fungo (reação negativa).[11]

Microquímica

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A L. brumalis produz o pigmento preto melanina,[12] especialmente sob altos níveis de umidade (35%-55%) no substrato de madeira.[13] A L. brumalis degrada a lignina na madeira produzindo enzimas, principalmente lignina peroxidase e lacase.[14]

Crescimento

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Lentinus brumalis

O estipe da Lentinus brumalis é fortemente fototrópico (cresce em direção à luz) antes da formação do píleo. Por exemplo, uma exposição de 12 a 300 segundos a 1.500 pés-velas de luz pode fazer com que o estipe se curve de 5 a 80° em 24 horas. Depois que o píleo se forma e atinge um diâmetro de 9 mm, o estipe para de crescer em direção à luz e, em vez disso, torna-se fortemente geotrópico (cresce para longe da atração gravitacional).[15]

Espécies semelhantes

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Uma possível sósia, a Lentinus strictipes, pode ser diferenciada da L. brumalis, pois não frutifica até abril, além de possuir poros menores e mais finos, que raramente são maiores que 0,5 mm. Uma parente mais próxima, a L. arcularius, difere da L. brumalis por seus poros maiores, que têm até 2,5 mm de largura e são facilmente reconhecíveis mesmo em basidiomas jovens.[1] A Neofavolus alveolaris tem um píleo mais pálido, poros e esporos maiores e um estipe mais lateral.[9] A L. longiporus tem poros significativamente mais longos e cresce sob salgueiros e álamos em abril e maio. Cerioporus leptocephalus, Cerioporus varius e Picipes melanopus têm um estipe preto escuro que não é encontrado em L. brumalis.[11]

Ecologia e distribuição

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A L. brumalis é saprófita em madeiras de lei mortas, em especial bétula, faia e freixo da montanha, embora em casos raros cresça em coníferas como tsuga e abeto. No Uzbequistão, também cresce em urtigas europeias, salgueiros e álamos.[4] Cresce solitária ou em pequenos grupos.[11] Na América do Norte, a L. brumalis é mais comum no leste, onde cresce de junho a outubro.[3] No norte da Europa, no entanto, frutifica no final de outubro e em março.[1]

Culturas de L. brumalis foram levadas a três satélites diferentes (a estação orbital Salyut 5, a estação orbital Salyut 6 e o Kosmos 690) para pesquisar os efeitos da ausência de gravidade, da orientação espacial e da luz sobre o geotropismo e a formação de seus basidiomas.[16] Na ausência de gravidade e luz, o estipe cresceu fortemente torcido em uma espiral ou bola, e não se formaram píleos, embora, na presença de luz, houvesse pouca diferença anatômica em relação às amostras de controle.[17] Entretanto, na Salyut 6, com as amostras no escuro, elas não formaram basidiomas.[18][19]

A L. brumalis foi estudada por sua capacidade potencial de degradar o dibutilftalato. Um estudo realizado em 2007 relatou que o dibutilftalato foi praticamente eliminado de um meio de cultura de L. brumalis em 12 dias, potencialmente por meio de transesterificação e desesterificação.[20]

O cogumelo da L. brumalis não é comestível e não tem utilidade como corante, pois produz pouca ou nenhuma cor.[21]

Ver também

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Referências

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  1. a b c Jahn, Hermann (1963). Mitteleuropäische Porlinge (Polyporaceae s. lato) und ihr Vorkommen in Westfalen [Central European polypore (Polyporaceae s. lato) and their occurrence in Westphalia] (em alemão) 4 ed. [S.l.: s.n.] pp. 30–31 
  2. Polypores and Similar Fungi of Eastern and Central North America. [S.l.]: University of Texas Press. 2021. p. 215. ISBN 978-1-4773-2273-4. doi:10.7560/322727 
  3. a b Phillips, Roger (2010). Mushrooms and Other Fungi of North America. Buffalo, NY: Firefly Books. p. 300. ISBN 978-1-55407-651-2 
  4. a b Khojimatov, Olim K.; Gafforov, Yusufjon; Bussmann, Rainer W., eds. (2023). «Ethnobiology of Uzbekistan». Ethnobiology: 1257. ISBN 978-3-031-23030-1. ISSN 2365-7553. doi:10.1007/978-3-031-23031-8 
  5. Persoon, C. H. (1794). «Neuer Versuch einer systematischen Eintheilung der Schwämme» [New attempt at a systematic classification of fungi]. Neues Magazin für die Botanik in ihrem ganzen Umfange (em alemão). 1: 107 – via Hathitrust Digital Library 
  6. Zmitrovich, Ivan V. (2010). «The Taxonomical and Nomenclatural Characteristics of Medicinal Mushrooms in Some Genera of Polyporaceae». International Journal of Medicinal Mushrooms (em inglês). 12 (1): 87–89. ISSN 1521-9437. doi:10.1615/IntJMedMushr.v12.i1.80 
  7. a b c «Polyporus brumalis (MushroomExpert.Com)». www.mushroomexpert.com. Consultado em 7 de janeiro de 2025 
  8. McKnight, Karl B.; Rohrer, Joseph R.; McKnight Ward, Kirsten; McKnight, Kent H. (2021). Peterson Filed Guide to Mushrooms (em inglês) 2nd ed. [S.l.]: Harper Collins. 276 páginas. ISBN 9780544236110 
  9. a b c d e f g Gibson, Ian. Beug, Michael, ed. «E-Flora BC Atlas Page». linnet.geog.ubc.ca. Consultado em 7 de janeiro de 2025 
  10. a b Gminder, Andreas; Karasch, Peter (2023). Das Kosmos Handbuch Pilze [The Kosmos Mushroom Handbook] (em alemão). [S.l.]: Franckh-Kosmos Verlags-GmbH & Company KG. p. 508 
  11. a b c d Labbé, Robert (2023). «Lentinus brumalis / Winter polypore». MycoQuebec. Consultado em 7 de janeiro de 2025 
  12. Sridhar, KR; Deshmukh, Sunil Kumar (2021). «Colourful Macrofungi and their Pigment Structures». Advances in Macrofungi; Industrial Avenues and Prospects. [S.l.]: CRC Press. ISBN 9781000460124 
  13. Tudor, Daniela (2014). Fungal Pigment Formation in Wood Substrate (Tese de PhD) (em inglês). University of Toronto. p. 150 
  14. Satyanarayana, Tulasi (2005). Microbial Diversity; Current Perspectives and Potential Applications (em inglês). [S.l.]: I.K. International. p. 822. ISBN 9788188237432 
  15. Giese, Arthur C. (2013). Photophysiology: Current Topics (em inglês). [S.l.]: Elsevier Science. 71 páginas. ISBN 9781483262284 
  16. Vaulina, E. N.; Palmbakh, L. R.; Antipov, V. V.; Anikeeva, I. D.; Kostina, L. N.; Zharikova, G. G.; Kasatkina, T. B. (1979). «Biological investigations on the orbital station "Salyut-5"». Life Sciences and Space Research. 17: 241–246. ISSN 0075-9422. PMID 12008713 
  17. Kasatkina, T. B.; Zharikova, G. G.; Rubin, A. B.; Palmbakh, L. R.; Vaulina, E. N.; Mashinsky, A. L. (1980), Holmquist, R., ed., «Development of Higher Fungi Under Weightlessness», ISBN 978-0-08-024436-5, Pergamon, Life Sciences and Space Research, 18: 205–211, PMID 11971286, doi:10.1016/b978-0-08-024436-5.50028-7, consultado em 7 de janeiro de 2025 
  18. Zharikova, G. G.; Rubin, A. B.; Nemchinov, A. V. (1977). «Effects of weightlessness, space orientation and light on geotropism and the formation of fruit bodies in higher fungi». Life Sciences and Space Research. 15: 291–294. ISSN 0075-9422. PMID 11962503 
  19. Moore, David (1991). «Perception and response to gravity in higher fungi – a critical appraisal». New Phytologist (em inglês). 117 (1): 3–23. ISSN 0028-646X. PMID 11541309. doi:10.1111/j.1469-8137.1991.tb00940.x 
  20. Lee, Soo-Min; Lee, Jae-Won; Koo, Bon-Wook; Kim, Myung-Kil; Choi, Don-Ha; Choi, In-Gyu (2007). «Dibutyl phthalate biodegradation by the white rot fungus, Polyporus brumalis». Biotechnology and Bioengineering. 97 (6): 1516–1522. ISSN 0006-3592. PMID 17221890. doi:10.1002/bit.21333 
  21. Bessette, Arleen R.; Bessette, Alan E. (2001). The Rainbow Beneath My Feet; A Mushroom Dyer's Field Guide (em inglês). [S.l.]: Syracuse University Press. p. 164. ISBN 9780815606802 

Ligações externas

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