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Receptor de membrana

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Destaque à estrutura de sete hélices α-transmembrana de um receptor acoplado à proteína G.
Destaque à estrutura de sete hélices α-transmembrana de um receptor acoplado à proteína G

Receptores de superfície celular (receptores de membrana, receptores transmembrana) são receptores que estão embutidos na membrana plasmática das células.[1] Atuam na sinalização celular recebendo (ligando-se a) moléculas extracelulares. São proteínas integrais de membrana especializadas que permitem a comunicação entre a célula e o espaço extracelular. As moléculas extracelulares podem ser hormônios, neurotransmissores, citocinas, fatores de crescimento, moléculas de adesão celular ou nutrientes; eles reagem com o receptor para induzir alterações no metabolismo e na atividade de uma célula. No processo de transdução de sinal, a ligação do ligante afeta uma mudança química em cascata através da membrana celular.

Estrutura e mecanismo

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Muitos receptores de membrana são proteínas transmembrana. Existem vários tipos, incluindo glicoproteínas e lipoproteínas.[2]  Centenas de receptores diferentes são conhecidos e muitos outros ainda precisam ser estudados.[3][4] Os receptores transmembrana são normalmente classificados com base em sua estrutura terciária (tridimensional). Se a estrutura tridimensional é desconhecida, eles podem ser classificados com base na topologia da membrana . Nos receptores mais simples, as cadeias polipeptídicas atravessam a bicamada lipídica uma vez, enquanto outros, como os receptores acoplados à proteína G, a cruzam até sete vezes. Cada membrana celular pode ter vários tipos de receptores de membrana, com diferentes distribuições de superfície. Um único receptor também pode ser distribuído de maneira diferente em diferentes posições da membrana, dependendo do tipo de membrana e da função celular. Os receptores geralmente estão agrupados na superfície da membrana, em vez de distribuídos uniformemente.[5][6]

Mecanismo

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Dois modelos foram propostos para explicar o mecanismo de ação dos receptores transmembrana.

  • Dimerização: O modelo de dimerização sugere que antes da ligação do ligante, os receptores existem em uma forma monomérica. Quando ocorre a ligação do agonista, os monômeros se combinam para formar um dímero ativo.
  • Rotação: A ligação do ligante à parte extracelular do receptor induz uma rotação (mudança conformacional) de parte das hélices transmembranares do receptor. A rotação altera quais partes do receptor são expostas no lado intracelular da membrana, alterando como o receptor pode interagir com outras proteínas dentro da célula.[7]

Domínios

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Os receptores transmembrana na membrana plasmática geralmente podem ser divididos em três partes.

E = espaço extracelular;P = membrana plasmática;I = espaço intracelular.

Domínio extracelular

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O domínio extracelular está apenas externamente à célula ou organela . Se a cadeia polipeptídica atravessa a bicamada várias vezes, o domínio externo compreende alças entrelaçadas através da membrana. Por definição, a principal função de um receptor é reconhecer e responder a um tipo de ligante. Por exemplo, um neurotransmissor, hormônio ou íons atômicos podem se ligar ao domínio extracelular como um ligante acoplado ao receptor.

Domínio transmembrana

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As duas classes mais abundantes de receptores transmembrana são os GPCRs e as proteínas transmembranares de passagem única.[8] Em alguns receptores, como os receptores colinérgicos, o domínio transmembrana forma um poro proteico através da membrana ou ao redor do canal iônico. Após a ativação de um domínio extracelular pela ligação do ligante apropriado, o poro torna-se acessível aos íons, que então se difundem. Em outros receptores, os domínios transmembrana sofrem uma alteração conformacional após a ligação, o que afeta as condições intracelulares. Em alguns receptores, como os membros da superfamília 7TM, o domínio transmembrana inclui uma bolsa de ligação ao ligante.

Domínio intracelular

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O domínio intracelular (ou citoplasmático) do receptor interage com o interior da célula ou organela, retransmitindo o sinal. Existem dois caminhos fundamentais para essa interação:

  • O domínio intracelular se comunica por meio de interações proteína-proteína contra proteínas efetoras, que por sua vez passam um sinal para o destino.
  • Com receptores ligados a enzimas, o domínio intracelular tem atividade enzimática. Muitas vezes, esta é a atividade da tirosina quinase. A atividade enzimática também pode ser devida a uma enzima associada ao domínio intracelular.

Transdução de sinal

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Reações externas e internas para transdução de sinal
Reações externas e internas para transdução de sinal.

Os processos de transdução de sinal através de receptores de membrana envolvem as reações externas, nas quais o ligante se liga a um receptor de membrana, e as reações internas, nas quais a resposta intracelular é desencadeada.[9][10]

A transdução de sinal através de receptores de membrana requer quatro partes:

  • Molécula de sinalização extracelular: uma molécula de sinalização extracelular é produzida por uma célula e é pelo menos capaz de viajar para as células vizinhas.
  • Proteína receptora: as células devem ter proteínas receptoras de superfície celular que se ligam à molécula de sinalização e se comunicam para dentro da célula.
  • Proteínas sinalizadoras intracelulares: passam o sinal para as organelas da célula. A ligação da molécula de sinal à proteína receptora ativará as proteínas de sinalização intracelular que iniciam uma cascata de sinalização.
  • Proteínas-alvo: as conformações ou outras propriedades das proteínas-alvo são alteradas quando uma via de sinalização está ativa e altera o comportamento da célula.
Três estados de conformação do receptor de acetilcolina.
Três estados de conformação do receptor de acetilcolina.

Os receptores de membrana são divididos principalmente por estrutura e função em 3 classes: receptor ligado ao canal iônico; receptor ligado à enzima; e receptor acoplado à proteína G.

  • Os receptores ligados a canais iônicos possuem canais iônicos para ânions e cátions e constituem uma grande família de proteínas transmembranares multipassagem. Eles participam de eventos de sinalização rápida geralmente encontrados em células eletricamente ativas, como neurônios. Eles também são chamados de receptores ionotrópicos controlados por ligantes. A abertura e o fechamento dos canais iônicos são controlados por neurotransmissores.
  • Os receptores ligados a enzimas são as próprias enzimas ou ativam diretamente as enzimas associadas. Estes são tipicamente receptores transmembranares de passagem única, com o componente enzimático do receptor mantido dentro da célula. A maioria dos receptores ligados a enzimas são ou estão associados a proteínas quinases.
  • Os receptores acoplados à proteína G são proteínas integrais de membrana que possuem sete hélices transmembranares. Esses receptores ativam uma proteína G após a ligação do agonista, e a proteína G medeia os efeitos do receptor nas vias de sinalização intracelular.

Receptores ligados a canais iônicos

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Durante o evento de transdução de sinal em um neurônio, o neurotransmissor se liga ao receptor e altera a conformação da proteína. Isso abre o canal iônico, permitindo que os íons extracelulares entrem na célula. A permeabilidade de íons da membrana plasmática é alterada, e isso transforma o sinal químico extracelular em um sinal elétrico intracelular que altera a excitabilidade da célula.[11]

O receptor de acetilcolina é um receptor ligado a um canal catiônico. A proteína consiste em quatro subunidades: alfa (α), beta (β), gama (γ) e delta (δ). Há duas subunidades α, cada uma com um local de ligação à acetilcolina. Esse receptor pode existir em três conformações. O estado fechado e desocupado é a conformação original da proteína. Quando duas moléculas de acetilcolina se ligam aos locais de ligação nas subunidades α, a conformação do receptor é alterada e o portão é aberto, permitindo a entrada de muitos íons e moléculas pequenas. Entretanto, esse estado aberto e ocupado dura apenas um pequeno período e, em seguida, o portão é fechado, tornando-se o estado fechado e ocupado. As duas moléculas de acetilcolina logo se dissociam do receptor, retornando ao estado nativo fechado e desocupado.[12][13]

Receptores ligados a enzimas

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Esboço de uma estrutura de receptor ligada a enzima (estrutura de IGF-1R).
Esboço de uma estrutura de receptor ligada a enzima (estrutura de IGF-1R).

Desde 2009, existem 6 tipos conhecidos de receptores ligados a enzimas:

Os receptores tirosina quinase têm a maior população e a aplicação mais ampla. A maioria dessas moléculas são receptores para fatores de crescimento, como fator de crescimento epidérmico (EGF), fator de crescimento derivado de plaquetas (PDGF), fator de crescimento de fibroblastos (FGF), fator de crescimento de hepatócitos [en] (HGF), fator de crescimento nervoso (NGF) e hormônios como a insulina.

A maioria desses receptores dimerizará após a ligação com seus ligantes, a fim de ativar outras transduções de sinal. Por exemplo, após o receptor do fator de crescimento epidérmico (EGF) se ligar ao seu ligante EGF, os dois receptores dimerizam e então sofrem fosforilação dos resíduos de tirosina na porção enzimática de cada molécula receptora. Isso ativará a tirosina quinase e catalisará outras reações intracelulares.

Receptores acoplados á proteína G

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Os receptores acoplados à proteína G compreendem uma grande família de proteínas de receptores transmembrana. Eles são encontrados apenas em eucariotos.[14] Os ligantes que ligam e ativam esses receptores incluem: compostos fotossensíveis, odores, feromônios, hormônios e neurotransmissores. Estes variam em tamanho de pequenas moléculas a peptídeos e grandes proteínas. Os receptores acoplados à proteína G estão envolvidos em muitas doenças e, portanto, são os alvos de muitas drogas medicinais modernas.[15]

Existem duas vias principais de transdução de sinal envolvendo os receptores acoplados à proteína G: a via de sinalização do AMPc e a via de sinalização do fosfatidilinositol.[16] Ambos são mediados pela ativação da proteína G. A proteína G é uma proteína trimérica, com três subunidades designadas como α, β e γ. Em resposta à ativação do receptor, a subunidade α libera o difosfato de guanosina (GDP) ligado, que é deslocado pelo trifosfato de guanosina (GTP), ativando assim a subunidade α, que então se dissocia das subunidades β e γ. A subunidade α ativada pode afetar ainda mais as proteínas de sinalização intracelular ou direcionar diretamente as proteínas funcionais.

Doenças relacionadas ao receptor de membrana

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Se os receptores de membrana estiverem desnaturados ou deficientes, a transdução do sinal pode ser prejudicada e causar doenças. Algumas doenças são causadas por distúrbios da função do receptor de membrana. Isso ocorre devido à deficiência ou degradação do receptor por meio de alterações nos genes que codificam e regulam a proteína receptora. O receptor de membrana TM4SF5 influencia a migração de células hepáticas e hepatomas.[17] Além disso, o receptor NMDA cortical influencia a fluidez da membrana e está alterado na doença de Alzheimer.[18]

Quando a célula é infectada por um vírus não envelopado, o vírus primeiro se liga a receptores de membrana específicos e então passa a si mesmo ou a um componente subviral para o lado citoplasmático da membrana celular. No caso de poliovírus, sabe-se in vitro que as interações com os receptores causam rearranjos conformacionais que liberam uma proteína virion chamada VP4. O terminal N do VP4 é miristilado e, portanto, hidrofóbico【ácido mirístico =CH 3 (CH 2 ) 12 COOH】. Propõe-se que as alterações conformacionais induzidas pela ligação ao receptor resultam na ligação do ácido mirístico ao VP4 e na formação de um canal para o RNA.

Projeto de fármacos baseado em estrutura

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Fluxograma de duas estratégias de desenho de fármacos baseado em estrutura.

Por meio de métodos como a cristalografia de raios X e a espectroscopia por RMN, as informações sobre as estruturas 3D das moléculas alvo aumentaram drasticamente, assim como as informações estruturais sobre os ligantes. Isso impulsiona o rápido desenvolvimento do design de drogas baseado em estrutura. Algumas dessas novas drogas têm como alvo os receptores de membrana. As abordagens atuais para o design de fármacos baseadas em estrutura podem ser divididas em duas categorias.

A primeira categoria é sobre a determinação de ligantes para um determinado receptor. Isso geralmente é feito por meio de consultas ao banco de dados, simulações biofísicas e construção de bibliotecas químicas. Em cada caso, um grande número de potenciais moléculas de ligantes é rastreado para encontrar aquelas que se encaixam no bolso de ligação do receptor. Esta abordagem é geralmente referida como "design de drogas baseado em ligantes". A principal vantagem de pesquisar um banco de dados é que ele economiza tempo e energia para obter novos compostos eficazes. Outra abordagem de design de drogas baseado em estrutura é sobre o mapeamento combinatório de ligantes, que é referido como "design de drogas baseado em receptor". Nesse caso, as moléculas de ligantes são projetadas dentro das restrições de um bolso de ligação, montando pequenos pedaços de maneira gradual. Essas peças podem ser átomos ou moléculas. A principal vantagem desse método é que novas estruturas podem ser descobertas.[19][20][21]

Outros exemplos

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Veja também

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Referências

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  1. «9.3: Signaling Molecules and Cellular Receptors - Types of Receptors». Biology LibreTexts (em inglês). 2018. Consultado em 24 de julho de 2023 
  2. Cuatrecasas P. (1974). «Membrane Receptors». Annual Review of Biochemistry. 43: 169–214. PMID 4368906. doi:10.1146/annurev.bi.43.070174.001125 
  3. Dautzenberg FM, Hauger RL (2002). «The CRF peptide family and their receptors: yet more partners discovered». Trends Pharmacol. Sci. 23 (2): 71–7. PMID 11830263. doi:10.1016/S0165-6147(02)01946-6 
  4. Rivière S, Challet L, Fluegge D, Spehr M, Rodriguez I (2009). «Formyl peptide receptor-like proteins are a novel family of vomeronasal chemosensors». Nature. 459 (7246): 574–7. Bibcode:2009Natur.459..574R. PMID 19387439. doi:10.1038/nature08029 
  5. Rothberg K.G.; Ying Y.S.; Kamen B.A.; Anderson R.G. (1990). «Cholesterol controls the clustering of the glycophospholipid-anchored membrane receptor for 5-methyltetrahydrofolate». The Journal of Cell Biology. 111 (6): 2931–2938. PMC 2116385Acessível livremente. PMID 2148564. doi:10.1083/jcb.111.6.2931 
  6. Jacobson C.; Côté P.D.; Rossi S.G.; Rotundo R.L.; Carbonetto S. (2001). «The Dystroglycan Complex Is Necessary for Stabilization of Acetylcholine Receptor Clusters at Neuromuscular Junctions and Formation of the Synaptic Basement Membrane». The Journal of Cell Biology. 152 (3): 435–450. PMC 2195998Acessível livremente. PMID 11157973. doi:10.1083/jcb.152.3.435 
  7. Maruyama, Ichiro N. (1 de setembro de 2015). «Activation of transmembrane cell-surface receptors via a common mechanism? The "rotation model"». BioEssays. 37 (9): 959–967. ISSN 1521-1878. PMC 5054922Acessível livremente. PMID 26241732. doi:10.1002/bies.201500041 
  8. Superfamilies of single-pass transmembrane protein ligands and regulators of receptors em Membranome database.
  9. Ullricha A., Schlessingerb J.; Schlessinger, J (1990). «Signal transduction by receptors with tyrosine kinase activity». Cell. 61 (2): 203–212. PMID 2158859. doi:10.1016/0092-8674(90)90801-K 
  10. Kenneth B. Storey (1990). Functional Metabolism. [S.l.]: Wiley-IEEE. pp. 87–94. ISBN 978-0-471-41090-4 
  11. Hille B. (2001). Ion channels of excitable membranes. [S.l.]: Sunderland, Mass. ISBN 978-0-87893-321-1 
  12. Miyazawa A.; Fujiyoshi Y.; Unwin N. (2003). «Structure and gating mechanism of the acetylcholine receptor pore». Nature. 423 (6943): 949–955. Bibcode:2003Natur.423..949M. PMID 12827192. doi:10.1038/nature01748 
  13. Akabas M.H.; Stauffer D.A.; Xu M.; Karlin A. (1992). «Acetylcholine receptor channel structure probed in cysteine-substitution mutants». Science. 258 (5080): 307–310. Bibcode:1992Sci...258..307A. PMID 1384130. doi:10.1126/science.1384130 
  14. King N, Hittinger CT, Carroll SB (2003). «Evolution of key cell signaling and adhesion protein families predates animal origins». Science. 301 (5631): 361–3. Bibcode:2003Sci...301..361K. PMID 12869759. doi:10.1126/science.1083853 
  15. Filmore, David (2004). «It's a GPCR world». Modern Drug Discovery. 2004 (November): 24–28 
  16. Gilman A.G. (1987). «G Proteins: Transducers of Receptor-Generated Signals». Annual Review of Biochemistry. 56: 615–649. PMID 3113327. doi:10.1146/annurev.bi.56.070187.003151 
  17. Müller-Pillascha F.; Wallrappa C.; Lachera U.; Friessb H.; Büchlerb M.; Adlera G.; Gress T. M. (1998). «Identification of a new tumour-associated antigen TM4SF5 and its expression in human cancer». Gene. 208 (1): 25–30. PMID 9479038. doi:10.1016/S0378-1119(97)00633-1 
  18. Scheuer K.; Marasb A.; Gattazb W.F.; Cairnsc N.; Förstlb H.; Müller W.E. (1996). «Cortical NMDA Receptor Properties and Membrane Fluidity Are Altered in Alzheimer's Disease». Dementia. 7 (4): 210–214. PMID 8835885. doi:10.1159/000106881 
  19. Wang R.; Gao Y.; Lai L. (2000). «LigBuilder: A Multi-Purpose Program for Structure-Based Drug Design». Journal of Molecular Modeling. 6 (7–8): 498–516. doi:10.1007/s0089400060498 
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  21. Jorgensen W.L. (2004). «The Many Roles of Computation in Drug Discovery». Science. 303 (5665): 1813–1818. Bibcode:2004Sci...303.1813J. PMID 15031495. doi:10.1126/science.1096361