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Orotidina 5'-fosfato decarboxilase

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Orotidina 5'-fosfato decarboxilase
Orotidina 5'-fosfato decarboxilase
OMP decarboxilase de E. coli.[1]
Indicadores
Número EC 4.1.1.23
Número CAS 9024-62-8--
Bases de dados
IntEnz IntEnz
BRENDA BRENDA
ExPASy NiceZyme
KEGG KEGG
MetaCyc via metabólica
PRIAM PRIAM
Estruturas PDB RCSB PDB PDBe PDBj PDBsum
Gene Ontology AmiGO / EGO


Orotidina 5'-fosfato decarboxilase (OMP decarboxilase, sendo OMP abreviação do termo em inglês orotidine 5'-phosphate decarboxylase) ou orotidilato decarboxilase é uma enzima envolvida na biossíntese da pirimidina. Ela catalisa a decarboxilação de monofosfato de orotidina (OMP) para formar monofosfato de uridina (UMP). A função desta enzima é essencial para a biossíntese de novo dos nucleotídeos de pirimidina trifosfato de uridina, trifosfato de citidina e trifosfato de timidina. OMP decarboxilase tem sido um alvo frequente de investigação científica devido à sua extrema eficiência catalítica demonstrada e sua utilidade como um marcador de seleção para engenharia de cepas de levedura.

Esquema da reação catalisada pela OMP descarboxilase

OMP decarboxilase é conhecido por ser um catalisador extraordinariamente eficiente capaz de acelerar a taxa de reação não catalisada por um fator de 1017. Para colocar isso em perspectiva, a reação não catalisada que levaria "78 milhões de anos" para converter metade dos reagentes em produtos é acelerada para "18 milissegundos" quando catalisada pela OMP descarboxilase.[2] Essa extrema eficiência enzimática é especialmente interessante porque as OMP descarboxilases não usam cofatores e não contêm sítios metálicos[3] ou grupos protéticos.[4] A catálise depende de um punhado de resíduos carregados de aminoácidos posicionados dentro do sítio ativo da enzima.

Imagem representando a estrutura do sítio ativo da OMP descarboxilase quando ligada ao inibidor BMP. Observe os resíduos Lys e Asp ao redor do 6-hidroxil do substrato. (Imagem capturada do instantâneo do visualizador PyMOL da estrutura cristalina 1LOR)[5]

O mecanismo exato pelo qual a OMP descarboxilase catalisa sua reação tem sido objeto de rigorosa investigação científica. A força motriz para a perda da carboxila ligada ao C6 do anel pirimidina vem da proximidade de um grupo carboxila do resíduo aspartato no sítio ativo da enzima, que desestabiliza o estado fundamental em relação ao estado de transição da reação não catalisada. Houve várias hipóteses sobre a forma que o estado de transição toma antes que a protonação do carbono C6 ocorra para produzir o produto final. Muitos estudos investigaram a ligação de um potente inibidor da OMP descarboxilase, monofosfato de 6-hidroxi uridina (BMP, um derivado de [[ácido barbitúrico), dentro do sítio ativo, para identificar quais resíduos de aminoácidos essenciais estão diretamente envolvidos com a estabilização do estado de transição. (Veja a figura da enzima ligada a BMP) Vários mecanismos para a descarboxilação enzimática de OMP foram propostas, incluindo a protonação em O2 para formar uma espécie zwitteriônica como um intermediário,[6] a estabilização de ânion de O4,[7] ou ataque nucleofílico em C5.[8] O consenso atual sugere que o mecanismo prossegue através de um carbânion estabilizado no C6 após a perda de dióxido de carbono. Este mecanismo foi sugerido a partir de estudos que investigaram os efeitos cinéticos dos isótopos em conjunto com a inibição competitiva e a mutagênese do sítio ativo.Jeehiun K Lee, Dean J Tantillo (25 de junho de 2004). Orotidine Monophosphate Decarboxylase: A Mechanistic Dialogue. [S.l.: s.n.] ISBN 9783540205661 </ref>[9][10][11] Neste mecanismo, a espécie de carbânion de vida curta é estabilizada por um resíduo de lisina próximo, antes de ser extinta por um próton. (Veja o esquema do mecanismo catalítico) A intermediação de um carbânion de vinil altamente básico que não se beneficia de estabilização eletrônica é rara em um sistema enzimático e em sistemas biológicos em geral. Notavelmente, o microambiente enzimático ajuda a estabilizar consideravelmente o carbânion. O pKaH do intermediário carbaniônico ligado à enzima foi medido como sendo menor ou igual a 22 com base em estudos de troca de deutério. Embora ainda altamente básico, o correspondente pKaH do intermediário carbaniônico livre é estimado ser muito maior, em torno de 30-34 (com base em medições no análogo 1,3-dimetiluracilo), levando à conclusão de que a enzima estabiliza o carbânion em pelo menos 14 kcal/mol.[11]

Esquema de reação mostrando o mecanismo de catálise da OMP descarboxilase através de um carbânion vinil putativo na posição C6. Este carbânion provavelmente é estabilizado pelo resíduo de lisina protonado próximo. Os resíduos Lys93 e Asp91 a numeração corresponde à sequência para OMP descarboxilase de S. cerevisiae.[12]

Vs UMP sintase

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Em leveduras e bactérias, OMP descarboxilase é uma enzima de função única. Entretanto, em mamíferos, OMP decarboxilase faz parte de uma única proteína com duas atividades catalíticas. Esta enzima bifuncional é denominada UMP sintase e também catalisa a reação anterior na biossíntese de nucleotídeos de pirimidina, a transferência de ribose 5-fosfato de 5-fosforribosil-1-pirofosfato a orotato para formar OMP. Em organismos que utilizam OMP descarboxilase, esta reação é catalisada por orotato fosforribosiltransferase.[13]

Importância na genética de leveduras

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Mutações no gene que codifica OMP descarboxilase em levedurs (URA3) leva à auxotrofia em uracila. Além disso, uma função OMP descarboxilase torna as cepas de levedura sensíveis à molécula ácido 5-fluoroorótico (5-FOA).[14] O estabelecimento do gene URA3 como um marcador de seleção com estratégias de seleção positiva e negativa tornou a expressão controlada da OMP descarboxilase uma ferramenta laboratorial significativa para a investigação da genética de leveduras..

Referências

  1. PDB 1EIX; Harris P, Navarro Poulsen JC, Jensen KF, Larsen S (Abril 2000). «Structural basis for the catalytic mechanism of a proficient enzyme: orotidine 5'-monophosphate decarboxylase». Biochemistry. 39 (15): 4217–24. PMID 10757968. doi:10.1021/bi992952r 
  2. Radzicka A, Wolfenden R (Janeiro 1995). «A proficient enzyme». Science. 267 (5194): 90–3. PMID 7809611. doi:10.1126/science.7809611 
  3. Miller BG, Smiley JA, Short SA, Wolfenden R (Agosto 1999). «Activity of yeast orotidine-5'-phosphate decarboxylase in the absence of metals». J. Biol. Chem. 274 (34): 23841–3. PMID 10446147. doi:10.1074/jbc.274.34.23841Acessível livremente 
  4. Miller BG, Wolfenden R (2002). «Catalytic proficiency: the unusual case of OMP decarboxylase». Annu. Rev. Biochem. 71: 847–85. PMID 12045113. doi:10.1146/annurev.biochem.71.110601.135446 
  5. Wu N, Pai EF (Agosto 2002). «Crystal structures of inhibitor complexes reveal an alternate binding mode in orotidine-5'-monophosphate decarboxylase». J. Biol. Chem. 277 (31): 28080–7. PMID 12011084. doi:10.1074/jbc.M202362200Acessível livremente 
  6. Beak P, Siegel B (1976). «Mechanism of decarboxylation of 1,3-dimethylorotic acid. A model for orotidine 5'-phosphate decarboxylase». J Am Chem Soc. 98 (12): 3601–6. PMID 1270703. doi:10.1021/ja00428a035 
  7. Lee JK, Houk KN (Maio 1997). «A proficient enzyme revisited: the predicted mechanism for orotidine monophosphate decarboxylase». 276 (5314): 942–5. PMID 9139656. doi:10.1126/science.276.5314.942 
  8. Silverman, R.B.; Groziak, M.P. (1982). «Model Chemistry for a Covalent Mechanism of Action of Orotidine 5'-Phosphate Decarboxylase». J. Am. Chem. Soc. 104 (23): 6434–6439. doi:10.1021/ja00387a047 
  9. Richavy MA, Cleland WW (2000). «Determination of the Mechanism of Orotidine 5'-Monophosphate Decarboxylase by Isotope Effects». Biochemistry. 39 (16): 4569–4574. PMID 10769111. doi:10.1021/bi000376p 
  10. Toth K, Amyes TL, Wood BM, Chan K, Gerlt JA, Richard JP (Outubro 2007). «Product Deuterium Isotope Effect for Orotidine 5'-Monophosphate Decarboxylase: Evidence for the Existence of a Short-Lived Carbanion Intermediate». J. Am. Chem. Soc. 129 (43): 12946–7. PMC 2483675Acessível livremente. PMID 17918849. doi:10.1021/ja076222f 
  11. a b Amyes TL, Wood BM, Chan K, Gerlt JA, Richard JP (Fevereiro 2008). «Formation and Stability of a Vinyl Carbanion at the Active Site of Orotidine 5′-Monophosphate Decarboxylase: pKa of the C-6 Proton of Enzyme-Bound UMP». J. Am. Chem. Soc. 130 (5): 1574–5. PMC 2652670Acessível livremente. PMID 18186641. doi:10.1021/ja710384t 
  12. Van Vleet JL, Reinhardt LA, Miller BG, Sievers A, Cleland WW (Janeiro 2008). «Carbon isotope effect study on orotidine 5'-monophosphate decarboxylase: support for an anionic intermediate». Biochemistry. 47 (2): 798–803. PMID 18081312. doi:10.1021/bi701664n 
  13. Yablonski MJ, Pasek DA, Han BD, Jones ME, Traut TW (1996). «Intrinsic activity and stability of bifunctional human UMP synthase and its two separate catalytic domains, orotate phosphoribosyltransferase and orotidine-5'-phosphate decarboxylase». J Biol Chem. 271 (18): 10704–10708. PMID 8631878. doi:10.1074/jbc.271.18.10704Acessível livremente 
  14. Boeke JD, LaCroute F, Fink GR (1984). «A positive selection for mutants lacking orotidine-5'-phosphate decarboxylase activity in yeast: 5-fluoro-orotic acid resistance». Mol Gen Genet. 197 (2): 345–346. PMID 6394957. doi:10.1007/BF00330984